Harald Huber
Dr. Harald Huber
Universität Regensburg
Lehrstuhl für Mikrobiologie
Universitätsstraße 31
D - 93053 Regensburg

Harald.Huber@Biologie.Uni-Regensburg.de

 

Arbeitsgebiete, Projekte:

1. Untersuchung der rein archaeellen Lebensgemeinschaft Ignicoccus hospitalis und Nanoarchaeum equitans:
Aus einem unterseeischen Vulkangebiet nördlich von Island (Kolbeinsey-Rücken) wurde von uns eine einzigartige, rein archaeelle Lebensgemeinschaft isoliert. Diese besteht aus den hyperthermophilen Archaeen Ignicoccus hospitalis und Nanoarchaeum equitans, welche in einer besonderen Beziehung zueinander stehen, die nach den momentan vorliegenden Ergebnissen keinem der klassischen Beziehungen Symbiose, Kommensalismus oder Parasitismus zugeordnet werden kann. N. equitans ist dabei obligat von seinem Wirt I. hospitalis abhängig.
Unsere Untersuchungen zeigten, dass beide Organismen nicht nur wegen Ihrer einzigartigen Interaktionen von Interesse sind .

Mikroskopische Bilder der Co-Kultur N. equitans und I. hospitalis

Abbildung 1:

Elektronenmikroskopische Aufnahmen und Fluoreszenzbild der Nanoarchaeum equitans - Ignicoccus hospitalis Co-Kultur

TEM a) Gefrierätzung einer I. hospitalis Zelle mit vier N. equitans Zellen.
TEM b) Ultradünnschnitt zweier Nanoarchaeum Zellen, angelagert an die äußere Membran einer Ignicoccus Zelle.
TEM c) Ignicoccus Zelle mit mehreren Nanoarchaeum Zellen, Platinbedampfung.

CLSM) Aufnahme mit Hilfe das confokalen Laserscanning-Mikroskops: Co-Kultur von Nanoarchaeum equitans (kleine Kokken, rot) und Ignicoccus hospitalis (große Kokken, grün) nach sequenzspezifischer (ss rRNA) Fluoreszenzfärbung.

Maßstab für alle Abbildungen: 1.0 µm

1.1. Nanoarchaeum equitans:
Nanoarchaeum equitans („der reitende Urzwerg“), wächst nur auf der Oberfläche des Archaeums Ignicoccus hospitalis („die gastliche Feuerkugel“) (Abb. 1). N. equitans-Zellen sind die kleinsten bisher bekannten Mikroorganismen, winzige Kugeln mit einem Durchmesser von lediglich 400 Nanometer (= 0,4 tausendstel Millimeter). Sie sind damit im Volumen über 100 x kleiner als eine E. coli Bakterienzelle und bereits im Größenbereich von großen Viren, z.B. dem Pockenvirus. Die Analyse des Genoms von N. equitans zeigte, dass es sich hier mit nur rund 490.000 Basenpaaren um das kleinste bisher bekannte archaeelle Genom und um eines der kleinsten Genome aller lebenden Zellen handelt. Dabei konnten so gut wie keine Stoffwechsel- oder Biosynthesegene nachgewiesen werden, was die Abhängigkeit von I. hospitalis unterstreicht. Der Lebensraum von N. equitans - Temperaturen um 100 °C, Sauerstofffreiheit, Gegenwart von Schwefel und vulkanischen Gasen – decken sich mit den Gegebenheiten, wie sie auf der Urerde vor etwa 3,8 Milliarden Jahren geherrscht haben. Somit könnte es sich möglicherweise bei N. equitans um eine noch recht primitive Lebensform, vielleicht sogar eine Art lebendes Fossil aus den Anfängen des Lebens auf unserer Erde, handeln. Auf Grund der einzigartigen Ribosomenstruktur (stark abweichende 16S-rRNA Sequenz) repräsentiert N. equitans ein eigenes Reich (Phylum) innerhalb der Archaeen, die Nanoarchaeota. Die großen 16S-rRNA-Sequenzunterschiede führten dazu, dass sich die Nanoarchaeota lange dem Nachweis aus Umweltproben mit Hilfe von PCR-Techniken entzogen. Mittlerweile konnten wir Gensequenzen von weiteren Vertretern der Nanoarchaeota mit Hilfe molekularer Methoden in mehreren Umweltproben aus kontinentalen und marinen Vulkangebieten nachweisen.
Auf Grund unserer Befunde ist es möglich, dieses interessante neue Reich von Archaeen genauer zu erforschen. Umfangreiche Wachstumsstudien und Optimierungen (zum Teil auch durchgeführt in unseren 300 l Fermentern des Biotechnikums) ermöglichen es uns (wenn auch in bescheidenem Umfang) Zellmengen für biochemische und molekulare Untersuchungen zu gewinnen.

 

1.2. Ignicoccus hospitalis:
Wie die beiden anderen Mitglieder der Gattung Ignicoccus (I. pacificus und I. islandicus) ist I. hospitalis ein hyperthermophiler (hitzeliebender) Mikroorganismus, der optimal bei 90 °C wächst. Alle Ignicoccus-Arten sind strikt anaerob, sie können nicht in Gegenwart von Sauerstoff wachsen. Sie stellen sämtliche Zellbestandteile selbst her, benötigen also keine organischen Nährstoffe im Medium. Dazu fixieren sie Kohlendioxid und gewinnen ihre Energie aus der Reduktion von elementarem Schwefel mit molekularem Wasserstoff. Vertreter der Gattung Ignicoccus sind die einzigen Archaeen, die als Zellwand eine äußere Membran besitzen, die sich in Lipid- und Proteinzusammensetzung deutlich von der äußeren Membran Gram-negativer Bakterien unterscheidet. Trotz der großen Ähnlichkeiten der einzelnen Ignicoccus-Arten zueinander kann jedoch nur I. hospitalis als Wirt für N. equitans dienen.

 

1.3. Stoffwechselwege im Organismensystem:
Die Genomanalyse von N. equitans lässt den Schluss zu, dass in der Organismen-Gemeinschaft alle biosynthetischen Prozesse zum Aufbau der Zellbestandteile von I. hospitalis durchgeführt werden. Ein Schlüssel zum Verständnis des Stoffwechsels von N. equitans liegt also im Verständnis des Stoffwechsels von I. hospitalis.
Diese umfangreichen Analysen wurden in Kooperation mit Prof. G. Fuchs vom Lehrstuhl für Mikrobiologie der Universität Freiburg sowie mit Dr. W. Eisenreich vom Lehrstuhl für organische Chemie der Technischen Universität München durchgeführt.
Wir konnten zeigen, dass I. hospitalis über einen bislang unbekannten CO2-Fixierungsweg verfügt (Abb. 2a und 2b). In diesem wird im ersten Schritt Acetyl-CoA zu Pyruvat carboxyliert, welches in Phosphoenolpyruvat (PEP) umgewandelt wird. PEP wird in einem zweiten CO2-Fixierungsschritt zu Oxalacetat carboxyliert. Oxalacetat ist Teil eines unvollständigen Citratzykluses, dem eine 2-Oxoglutarat:Ferredoxin-Oxidoreduktase fehlt. Die Regeneration des primären CO2-Akzeptors Acetyl-CoA (Fig. 2b) geschieht über Succinyl-CoA, das zu 4-Hydroxybutyrat reduziert und anschließend zum CoA Thioester aktiviert wird. 4-Hydroxybutyryl-CoA wird unter Bildung von Crotonyl-CoA dehydratisiert und durch Betaoxidation entstehen daraus zwei Moleküle Acetyl-CoA. Somit bildet ein Durchlauf des Zykluses ein Molekül Acetyl-CoA. Der neue (insgesamt damit 6. bekannte) CO2-Fixierungsweg wird als Dicarboxylat/4-hydroxybutyrat Zyklus bezeichnet.
Eine Analyse weiterer zentraler Biosynthesewege in I. hospitalis zeigte zudem das Vorhandensein unkonventioneller Biosynthesewege, wie den 2-Aminoadipat-Weg zur Synthese von Lysin, den Citramalat-Weg zur Synthese von Isoleucin und den Ribulose-Monophosphat-Weg zur Synthese von Pentosephosphaten.

Neuer CO2-Fixierungsweg bei Ignicoccus Abb. 2a

Abb. 2b

Über den Stoffwechsel von N. equitans ist wenig bekannt. Dieser Organismus verfügt jedoch über das kleinste bisher bekannte Genom, dem fast alle bekannten Gene für Biosynthese- oder Abbauwege fehlen. In Zusammenarbeit mit Prof. R. Summons, Prof. am Institut für Geobiologie des Massachusetts Instituts of Technology in Boston, vergleichende Analysen der Membranlipidzusammensetzung von N. equitans und I. hospitalis durchgeführt. Sie ließen den Schluss zu, dass N. equitans seine Lipide direkt von seinem Wirt I. hospitalis bezieht. 13C-Markierungsexperimente an Aminosäuren gaben deutliche Hinweise darauf, dass N. equitans auch seine Aminosäuren direkt von I. hospitalis übernimmt. Auf welche Weise der Austausch dieser Zellkomponenten stattfindet, ist bislang ungeklärt.

 

2.) Isolierung und Charakterisierung neuartiger hyperthermophiler Archaeen aus Hochtemperaturökosystemen:
Hyperthermophile Vertreter der Archaeen (d.h. Organismen mit optimalen Wachstumstemperaturen über 80°C) konnten bislang aus zahlreichen kontinentalen Hochtemperaturökosystemen unserer Erde isoliert werden, wie z. B. aus Island, Italien oder dem Yellowstone National Park, sowie aus untermeerischen Hydrothermalsystemen wie beispielsweise dem Mittelatlantischen Rücken oder dem Südpazifischen Rücken. Diese Mikroorganismen repräsentieren tiefabzweigende Linien im Stammbaum des Lebens und sind daher auch evolutionsgeschichtlich von großem Interesse. Schwerpunkte der Forschung sind die Anreicherung dieser Organismen, Entwicklung neuer Kultivierungstechniken, die physiologisch- biochemische und molekulare Charakterisierung der isolierten Stämme sowie deren phylogenetische Einordnung. Im institutseigenen Biotechnikum werden diese Organismen auch in größerem Maßstab gezüchtet (bis 300 l), wobei von uns auch Optimierungen der Anzuchtbedingungen und der Kulturmedien (z.B. auch durch ICP-Analysen) durchgeführt werden.

 

EM-Aufnahmen Ignicoccus islandicus
Abbildung a Ignicoccus islandicus, Schrägbedampft
Abbildung b Ignicoccus islandicus, Ultradünnschnitt
Abbildung c Ignicoccus islandicus, Gefrierbruch
C = Cytoplasma; CM = Cytoplasmamembran; P = Periplasma; OS = Äussere Membran; FF = Gefrierbruch durch die äussere Membran

Maßstab für alle Abbildungen, 1,0 µm

 

3.) Überleben von hitzeliebenden Archaeen im Weltraum:
Hitzeliebende (hyperthermophile) Archaeen leben unter extremen Bedingungen, die häufig denen der Urerde (anaerob, heiß, Gegenwart von reduzierenden Gasen wie H2S, H2, NH3) ähneln. Bei Forschungen zu Entwicklung des Lebens sind sie damit als Modellorganismen von großem Interesse. In einer Kooperation mit dem Deutschen Zentrum für Luft- und Raumfahrt (DLR, Köln, Abteilung Strahlenbiologie) wird getestet, ob Archaeen unter simulierten Weltraumbedingungen überleben könnten. Damit soll überprüft werden, ob Organismen durch Meteoriten im Weltraum verbreitet werden können und auf Planeten oder Monden, die geeignete Wachstumsbedingungen zeigen (z.B. der Mars), wachsen könnten. Hyperthermophile Archaeen erscheinen für diese Forschungen besonders geeignet, da sie durch ihr Leben unter extremen Umweltbedingungen effiziente Reparaturmechanismen und andere zelluläre Anpassungen wie eine erhöhte Stabilität der Zellbausteine besitzen. So könnte es möglich sein, Zellschädigungen durch die große Druck- und Hitzeeinwirkung bei Meteoriteneinschlag sowie durch Vakuum und ionisierende Strahlen im Weltraum zu kompensieren. In Voruntersuchungen konnte gezeigt werden, dass neun von 16 untersuchten Archaeenarten eine erhöhte Resistenz gegenüber Trockenheit und/oder UV-Strahlung aufweisen. Interessanterweise treten große Unterschiede auch bei eng verwandten Arten auf. Im Folgenden sollen diese Daten erweitert und verifiziert werden, und die den Resistenzen zugrunde liegenden molekularen Mechanismen aufgedeckt werden. Um dieses Ziel zu erreichen werden sowohl mikrobiologische Verfahren als auch biochemische Mittel verwendet.

Link zur DLR

 

 

4.) Mikroorganismen auf Mineraloberflächen: Einfluss der Struktur und der kristallographischen Orientierung auf den mikrobiellen Angriff auf Pyrit:
In Zusammenarbeit mit dem Institut für Geowissenschaften der Universität Kiel wird in diesem Projekt die Orientierungsabhängigkeit der mikrobiellen Oxidation von Pyrit durch unterschiedliche mesophile Bakterien und thermophile Archaeen untersucht. Dabei wird die Zerstörung des Pyrits als Funktion verschiedener experimenteller Parameter wie pH-Wert, Temperatur, Bakterien-Stamm, Zusammensetzung der Nährmedien, Herkunft und Zusammensetzung der Mineralprobe usw. beobachtet. Ziel ist es, Fragen nach den grundlegenden Mechanismen der mikrobiellen Pyritauflösung zu beantworten. Epifluoreszenz-Mikroskop- und Rasterelektronenmikroskop- (SEM) Aufnahmen zeigen, dass einige Bakterien-Stämme sich fast gänzlich an die Mineraloberflächen anheften, wogegen andere Stämme überwiegend frei im Kulturmedium verbleiben. Dabei entstehen innerhalb weniger Tage typische Korrosionsmuster wie Kanäle oder umgekehrte Pyramiden. Es wird erwartet, dass diese Untersuchungen offene Fragen, wie z.B. nach dem direkten Auflösungsmechanismus oder nach der Spezifizität der Bakterien-Stämme für bestimmte Metallionen beantworten.

 

 

5.) Zusammenarbeit mit der Schmack Biogas AG (Schwandorf):
Im Rahmen eines neuen Forschungs- und Entwicklungsauftrages ist es das Ziel, grundlegende Erkenntnisse über die Beteilung und das Zusammenwirken der bei der Biogasherstellung involvierten Mikroorganismen zu erhalten. Durch die erhaltenen Ergebnisse soll der Prozeß effizienter und damit kostengünstiger gestaltet werden können.
Link zu Schmack Biogas

 

Mitarbeiter:

Oktober 2009

Dr. Harald Huber

(Telefon +49-941-943-3185)
(Telefax +49-941-943-2403)

(Telefon +49-941-943-4343)
 
(Telefon +49-941-943-3183)
 
(Telefon +49-941-943-3184)
 
Kristina Beblo » DLR Köln

 

Forschungsförderung:

1.) Gefördert durch DFG-Projekt HU703/2-1
2.) Gefördert durch DFG-Projekt TH422/8-1
3.) Industrieprojekte
4.) Abgeschlossene Förderprojekte: DFG-Projekt HU703/1-1 bis HU703/1-3

 

Lehrveranstaltungen:

• Grundkurs Mikrobiologie
• Praktikum Organismische Mikrobiologie I
• Forschungspraktikum Organismische Mikrobiologie II
• Forschungspraktikum Mikrobiologie
• Mikrobiologisches Schwerpunktpraktikum
• Vorlesung: Einführung in die Biochemie, Mikrobiologie und Genetik für Realschule, Hauptschule, Grundschule

 

ausgewählte Publikationen

 

Harald Huber Gabi Leichtl Vroni Menath Ulf Küper Catrin Wartner Lydia Kreuter Alina Röhl